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GMS150高精度氣體調控系統(tǒng)可以將*多4種不同氣體進行精確混合。每路輸入氣體的流量使用熱式質量流量計精確測量，并由內置的質量流量控制器進行精準控制，輸出的是完全混合的均質氣體。氣體輸入輸出使用Prestolok快速安全接頭，保證使用過程中的便捷性與安全性。

GMS150高精度氣體調控系統(tǒng)可用于二氧化碳、氮氣、一氧化碳、甲烷、氨氣以及其他氣體的濃度控制。

GMS150高精度氣體調控系統(tǒng)分為GMS150版和GMS150-MICRO版，其中GMS150版精度更高，GMS150-MICRO版可調控流速更大。

應用領域

• 與植物培養(yǎng)箱、光養(yǎng)生物反應器等聯(lián)用，

  進行精確氣體控制培養(yǎng)

• 模擬不同CO₂濃度環(huán)境，研究溫室效應

  對植物/藻類的影響

• 研究CO₂濃度與光合作用的關系

• 模擬煙氣等有害氣體對植物/藻類的影響

• 研究植物/藻類對有害氣體的處理與利用

技術參數(shù)：

• 測量原理：熱式質量流量測量法

• 可調控氣體：空氣、氮氣、二氧化碳、氧氣、一氧化碳、甲烷、氨氣等干燥純凈、無腐蝕性、無爆炸性氣體，氣源需用戶自備

• 調控通道：標配為2通道，通道1為Air-N₂，通道2為CO₂，*多可擴展為4通道

• 工作溫度：15-50℃

• 輸入/輸出接頭：Parker Prestolok接頭(6mm)

• 輸入壓力：3-5bar

• 密封：氟化橡膠

• 顯示屏：8×21字符液晶顯示屏

• 尺寸：37cm×28×15cm

• 供電：115-230V交流電

• 可聯(lián)用儀器：FMT150藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)、MC1000 8通道藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)、FytoScope系列智能LED光源生長箱、用戶自行設計的培養(yǎng)箱或反應器（可提供氣路連接方案）等

與中科院海洋所自行設計的培養(yǎng)裝置聯(lián)用的GMS150

GMS150版調控參數(shù)：

• *小流量范圍：0.02 - 1 ml/min

• **流量范圍：20 - 1000 ml/min

• 可定制流量范圍：可在**流量和*小流量之間定制。標準配置通道1(Air-N₂): 20-1000 ml/min；通道2(CO₂): 0.4-20 ml/min；可調控CO₂濃度0.04% - 100%（實際調控濃度與流量有關）

• 精度：±0.5%，加全量程±0.1%（3-5ml/min為全量程±1%，＜3ml/min為全量程±2%）

• 穩(wěn)定性：<全量程±0.1%（參考1ml/min N₂）

• 穩(wěn)定時間：1~2s

• 預熱時間：30min預熱達到**精度，2min預熱偏差±2%

• 溫度靈敏度：<0.05%/℃

• 壓力靈敏度：0.1%/bar（參考N₂）

• 姿態(tài)靈敏度：1bar 壓力下與水平面保持90°**誤差0.2%（參考N₂）

• 重量：7kg

GMS150-MICRO版調控參數(shù)：

• *小流量范圍：0.2 - 10 ml/min

• **流量范圍：100 - 5000 ml/min

• 可定制流量范圍：可在**流量和*小流量之間定制。標準配置通道1(Air-N₂): 40-2000 ml/min；通道2(CO₂): 0.8-40 ml/min；可調控CO₂濃度0.04% - 100%（實際調控濃度與流量有關）

• 精度：±1.5%，加全量程±0.5%

• 重復性：流量<20 mlmin為全量程±0.5%，流量>20 ml/min為實際流量±0.5%

• 穩(wěn)定時間：1s

• 預熱時間：30min預熱達到**精度，2min預熱偏差±2%

• 溫度靈敏度：零點<0.01%/℃，滿度<0.02%/℃

• 姿態(tài)靈敏度：1bar 壓力下與水平面保持90°**誤差0.5 ml/min（參考N₂）

• 重量：5kg

應用案例：

與FMT150藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)聯(lián)用研究藍藻Cyanothece sp. ATCC 51142 的超日代謝節(jié)律（Cerveny， 2013， PNAS）

產(chǎn)地：歐洲

參考文獻：

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2.Mitchell M C， et al. 2017. Pyrenoid loss impairs carbon-concentrating mechanism induction and alters primary metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. Journal of Experimental Botany， 68(14): 3891-3902

3.Hulatt C J， et al. 2017. Polar snow algae as a valuable source of lipids? Bioresource Technology， 235: 338-347

4.Jouhet J， et al. 2017. LC-MS/MS versus TLC plus GC methods: Consistency of glycerolipid and fatty acid profiles in microalgae and higher plant cells and effect of a nitrogen starvation. PLoS ONE 12(8): e0182423

5.Angermayr S A， et al. 2016. Culturing Synechocystis sp. Strain PCC 6803 with N₂ and CO₂ in a Diel Regime Reveals Multiphase Glycogen Dynamics with Low Maintenance Costs. Appl. Environ. Microbiol.， 82(14):4180-4189

6.Acu?a A M， et al. 2016. A method to decompose spectral changes in Synechocystis PCC 6803 during light-induced state transitions. Photosynthesis Research， 130(1-3): 237-249