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FL3500/F快速版葉綠素?zé)晒鈨x
FL 3500/F快速版葉綠素?zé)晒鈨x的時間分辨率在標(biāo)準(zhǔn)版的基礎(chǔ)上提高到1 μs,可精確捕捉和描繪快速熒光瞬變過程,使得運用PAM技術(shù)對OIJP曲線和光閃熒光誘導(dǎo)的快速動力學(xué)測量更加準(zhǔn)確高效,能夠更加精確地計算各種相關(guān)參數(shù)。
該系統(tǒng)可用于藍(lán)綠藻或綠藻等微藻,葉綠體或類囊體懸浮物,乃至葉片的光合作用研究的強(qiáng)大科研工具。其核心結(jié)構(gòu)是包含了一個懸浮液標(biāo)準(zhǔn)樣品杯的光學(xué)測量頭,內(nèi)置3組LED光源和1個500 kHz/16位 AD 轉(zhuǎn)換的PIN二極管信號檢測器。AD轉(zhuǎn)換的增益和積分時間可以通過軟件控制。檢測器測量葉綠素?zé)晒庑盘柕臅r間分辨率可高達(dá)1 μs 。系統(tǒng)配置的光合放氧測量模塊,使其可以對放氧復(fù)合物的狀態(tài)轉(zhuǎn)換做更深入研究。
應(yīng)用領(lǐng)域:
· 植物光合特性和代謝紊亂篩選
· 生物和非生物脅迫的檢測
· 植物抗脅迫能力或者易感性研究
· 代謝混亂研究
· 光合系統(tǒng)工作機(jī)理研究
· 受脅迫植物光合生理應(yīng)對策略研究
典型樣品:
· 藍(lán)藻(藍(lán)細(xì)菌)
· 綠藻
· 葉綠體懸浮物
· 類囊體懸浮物
· 植物碎片
功能特點:
· 具備雙通道測量控制,可以與各種測量單元如標(biāo)準(zhǔn)版、快速版、葉夾式及水下測量頭等配合使用,各版本的測量頭可互換使用
· 內(nèi)置多種可用戶自行修改的測量程序,涵蓋目前國際上對于葉綠素?zé)晒獾母鞣N一般性研究和深入機(jī)理研究
· 配備單翻轉(zhuǎn)光(STF),可進(jìn)行QA–再氧化動力學(xué)、S狀態(tài)轉(zhuǎn)換等光合機(jī)理研究
· 配備高靈敏度檢測器,可進(jìn)行OJIP快速熒光動力學(xué)分析
· 可控制測量樣品的溫度并進(jìn)行磁力攪拌
技術(shù)參數(shù):
· 實驗程序:葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)測量;PAM(脈沖調(diào)制)測量;OJIP快速熒光動力學(xué)測量;QA–再氧化動力學(xué);S狀態(tài)轉(zhuǎn)換;葉綠素?zé)晒獯銣?;光系統(tǒng)II有效天線色素大小
熒光參數(shù):F0,Fm,Fv,F0’,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETR等50多項葉綠素?zé)晒鈪?shù)與圖像,OJIP曲線與F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多項相關(guān)參數(shù)
· 時間分辨率(采樣頻率):高靈敏度檢測器,時間分辨率達(dá)4μs
· 控制單元:雙通道通用高度精確性自動微處理器,可以與各種測量單元如標(biāo)準(zhǔn)版、快速版、葉夾式及水下測量頭等配合使用(無需另行購買控制單元)
· 測量光閃:標(biāo)準(zhǔn)為波長617nm的橙光或455nm的藍(lán)光,光閃時間2–5μs
· 單翻轉(zhuǎn)飽和光閃:標(biāo)準(zhǔn)光源為630nm的紅光,光閃時間20–50μs
· 持續(xù)光化學(xué)光:標(biāo)準(zhǔn)為630nm的紅光或455nm的藍(lán)光,**光強(qiáng)2500 μmol(photons)/m2.s
· 遠(yuǎn)紅外光源(選配):用于激發(fā)光系統(tǒng)I,波長735nm
· 氧電極(選配):測量藻類的氧氣釋放
· 每組lED光源強(qiáng)度和時間可通關(guān)軟件調(diào)控,同時光源可根據(jù)研究要求選配
· 溫度控制:TR 2000溫度調(diào)節(jié)器,控溫范圍0–70℃,精確度0.1℃
· 電磁攪拌:8mm×3mm標(biāo)準(zhǔn)磁力棒
· 樣品試管:底面積10×10mm,容積4ml
· AD轉(zhuǎn)換器:試管式為500 kHz/16–bit
· FluorWin軟件:定義或創(chuàng)建實驗方案、光源控制設(shè)置、數(shù)據(jù)輸出、分析處理和圖表顯示
典型應(yīng)用:熒光誘導(dǎo)過程分析
產(chǎn)地:捷克
參考文獻(xiàn):
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§ Excess Ca2+does not alleviate but increases the toxicity of Hg2+ to photosystem II in Synechocystis sp.(Cyanophyta), D Zhang, et al, 2013. Ecotoxicology and environmental safety
§ Inhibition of the Water Oxidizing Complex of Photosystem II and the Reoxidation of the Quinone Acceptor QA? by Pb2+, A Belatik, et al, 2013. PloS one
§ Destabilization of the Oxygen Evolving Complex of Photosystem II by Al3+, I Hasni, et al, 2013. Photochemistry and Photobiology
§ Effects of Sb (V) on growth and chlorophyll fluorescence of Microcystis aeruginosa (FACHB–905),S Wang, et al, 2012. Current Microbiology
§ Correlations between the temperature dependence of chlorophyll fluorescence and the fluidity of thylakoid membranes, A Tovuu, et al, 2012. Physiologia Plantarum
§ Developmental Defects in Mutants of the PsbP Domain Protein5 inArabidopsis thaliana. JL Roose, et al, 2011. PloS one
§ Inhibition of photosystems I and II activities in salt stress–exposed Fenugreek (Trigonella foenum graecum). M Zaghdoudi, et al, 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology
§ Productivity correlated to photobiochemical performance of Chlorella mass cultures grown outdoors in thin–layer cascades. J Masojídek, et al, 2011. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology
§ Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese–Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose, et al, 2011. Biochemistry
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